PRACTICA DE BIOQUIMICA PARA VETERINARIA No. 11

 

ACIDOS NUCLEICOS: AISLAMIENTO DE RNA A PARTIR DE HEPATOCITOS

 

OBJETIVO:

 

El alumno aislara el ácido nucleico RNA a partir de células hepáticas, aplicara además las pruebas químicas que demuestren  su presencia en el extracto obtenido.

 

INFORMACIÓN GENERAL:

 

los ácidos nucleicos son biopolímeros sumamente importantes dentro de las células, su principal función es participar en la síntesis de proteínas, y además, participar en los fenómenos de reproducción celular.

Existen 2 tipos principales de ácidos nucleicos:

El DNA ( ácido ácido) y el RNA (acido ribunucleico).

 

Los ácidos nucleicos son también son precursores de nucleoproteinas.en cuanto a su estructura química, los ácidos nucleicos constan de la unión de numerosos nucleótidos, los cuales a su vez tienen: una base nitrogenada que puede ser ; purica ( adenina o guanina), pirimidinica (citosina, timina o uracilo), consta también de un azúcar pentosa (ribosona o desoxirribosa ), y además fósforo.

 

Los compuestos que poseen los tres elementos : base nitrogenada, azúcar y fósforo, reciben en nombre de nucleótidos.  Aquellos  que carecen de fósforo reciben el nombre de nucleosidos. Es decir, los nucleosidos, forman nucleótidos cuando se les añade fósforo a la molécula.

 

Para el caso de RNA, existen  3 tipos dentro de las células: RNA mensajero, RNA de transferencia y RNA ribosomatico, la estructura química es semejante , lo que varia es su peso molecular, tamaño, forma tridimensional, y sobre todo la función que desempeña.

 

 

MATERIAL                                                                         REACTIVOS

 

3 pipetas de 10ml.                                                                  Fenol 90%

3 pipetas de 1 ml.                                                                   Acetato de potasio

1 varilla de vidrio                                                                    200g/lt ph 5

2 vasos de p.p. 250 ml                                                etanol

1 probeta de 50 ml.                                                                Éter etílico

1 vaso de p.p. 500 ml.                                                            Reactivos de fiske-subarow

3 tubos de ensayo 18 x 150 mm.                                            Molidato amonio 2.5 %

1 trozo de gasa                                                                       H2SO4  13 N

1 mechero                                                                              H2SO4  10 N

1 tripie                                                                                    reactivos de bial

1 tela asbesto                                                                         sulfito de sodio 20%

1 guantes de hule                                                                    sulfito ácido de sodio 15%

1 centrifuga

1 bomba de vació

1 embudo buchner                                                                  MATERIAL BIOLOGICO

1 matraz kitasato                                

1 cuchillo                                                                                50 g de hígado de res

hielo en cubos

 

DESARROLLO DEL EXPERIMENTPO:

 

 

11.1 ASILAMIENTO DE RNA

 

 

1.      pesar 50 g de hígado. cortarlo en trozos pequeños.

 

2.      pasar los trozos a un vaso de precipitado de 250 ml. Y añadir 25 ml. De agua destilada fría.

 

3.      colocar una gasa fina en un embodo fichner. Conectar el embudo al kitasato y este a la bomba de vació y aplicar succión.

 

 

4.      filtrar el homogenizado de hígado a través del embudo y recibirlo en el kitasato.

 

5.      HUTILICE GUANTES DE HULE EN ESTE PASO. Añade rápidamente  el filtrado, sin dejar de agitar  con una barrilla de vidrio, 25 ml. De fenol al 90%

 

 

6.      pasar la solución del paso anterior a un vaso de precipitados de 250 ml. Añadirle un imán  y colocarlo en el agitador mecánico por 30 min.

 

7.      enfriar en baño maría de hielo picado

 

8.      centrifugar a 3000 r.p.m. por 15 min.

 

9.      decantar y conservar el sobrenadante

 

10.  enfriar de nuevo en baso maría  de hielo picado el sobre nadante

 

11.  centrifugar de nuevo a 3000 r.p.m. durante 5 min.

 

12.  medir el volumen de sobenadante recolectado y agar una décima parte de este volumen de acetato de potasio al 20 % (ph 5)

 

13.  agregar  lentamente y agitando, un volumen al doble del sobrenadante  de alcohol absoluto frió

 

14.  enfriar por 5 min. en baño maría de hielo

 

15.  centrifugar  5 min. a 3000 r.p.m.

 

16.  pese el peso del papel filtro que va a utilizar en el paso 17 .anote este peso

 

17.  prepare el equipo de filtración al vació de la siguiente forma; A) coloque un papel

 

18.  filtro dentro del embudo fichner,B) monte el embudo sobre un matraz kitasato, C) conecte el kitasato a la bomba de vació y encienda la bomba

 

19.  pasar la solución del paso 15 al embudo buchner

 

20.  lavar con 10 ml. De alcohol absoluto (etanol)

 

21.  lave con 10 ml. De éter

 

22.  secar al aire y pesar para calcular el rendimiento considere restar el peso del papel filtro usado

 

 

 

 11.1 – RESULTDOS ESPERADOS

 

al final delos pasos anteriores, se espera que usted haya  asilado el RNA del resto de los componentes presentes en las células hepáticas. Se procederá a comprobar la presencia de algunos de los elementos presentes en los ácidos nucleicos.

 

 

11.2 HIDRÓLISIS DEL RNA  E IDENTIFICACIÓN DE SUS COMPONENTES

 

 

A.- IDENTIFICACIÓN DEL AZUCAR PENTOSA

 

  1. tomar 0.2 gr. Del precipitado obtenido, colocarlo en un tubo de ensayo y añadirle  2 ml. De H2SO4 13 N.

 

  1. hervir  a la flama del mechero ( suavemente ), agitando , durante  10 min.

 

  1. retire con una pipeta pasteur una pequeña porción del hidrolizado

 

  1. coloque 6 gotas del hidrolizado  en un tubo de ensayo pequeño

 

  1. añadir 0.5 ml de reactivo de bial y agite.

 

 

RESULTADOS ESPERADOS

 

La presencia de azúcar pentosa ( ribosa), que contiene el RNA, se manifiesta  por la aparición de un color verde azuloso, debido a la reacción del furfural (producido al usar HCL sobre el carbohidratos), mas el orcinol que contiene el reactivo de bial.

 

B.- IDENTIFICACIÓN DE FOSFATO

 

  1. tomar con una pipeta pasteur  aprox. 1 ml del hidrolizado y pasarlos a un tubo de ensayo

 

  1. añadir 0.5 ml. H2SO4   10 N  y  1 ml. De molibdato de amonio al 2.5%

 

  1. añadir 1 ml.  De reactivo de fiske-subarow y dejar reposar  10 min.

 

 

RESULTADOS ESPERADOS

 

Se debe desarrollar un color azul, debido a la reacción del naftol-sulfonato sodio con el fosfato presente en el RNA.

 (el naftol-sulfonatol es el principal componente del reactivo de fiske-subarow)

 

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