Inmunofluorescencia indirecta


 

Objetivo

 

Detectar la presencia o ausencia de ANCA en suero humano mediante leucocitos polimorfonucleares fijados en etanol.

 

Material

 

Preparaciones de neutrófilos sobre portaobjetos esmerilados.

Cubetas de lavado.

Cámaras húmedas.

Microscopio óptico de fluorescencia.

 

Reactivos

 

PBS

IgG (rabbit anti-human) FITC

Fosfato (PO43-)

Cloruro sódico (NaCl)

p-fenilendiamina

Bicarbonato sódico (NaHCO3)

Glicerina (C3H8O3)

 

Métodos

 

Preparación de los reactivos

 

Medio de montaje: solución de cloruro sódico-fosfato tamponada

 

100 mg p-fenilendiamina + 10 ml de PBS + 90 ml glicerina.

Ajustamos el pH-8  con 0.5 M de carbonato-bicarbonato tamponado a pH-9

Conservamos a –20oC preservado de la luz.

 

Técnica

  1. Diluimos el suero problema y los controles
  2. Lavamos los portas  preparados (preparación de neutrófilos fijados) en PBS, 5 minutos.

Preparación de neutrófilos

  1. Secamos los restos de PBS y los colocamos en una cámara húmeda.
  2. Alicuotamos 100 ul de cada suero sobre la preparación de neutrófilos.
  3. Incubamos entre 30 y 45 minutos en cámara a temperatura ambiente.
  4. Lavamos 5 minutos en PBS x 3
  5. Añadimos 100 ul del anticuerpo conjugado con FITC
  6. Incubamos en cámara húmeda y oscura durante 30-45 minutos.
  7. Lavamos 5 minutos en PBS x 4
  8. Secamos y  montamos la preparación en la solución de glicerol-fosfato. Es un “antifading” que evita el efecto “bleaching” que la fuente de luz tiene sobre la inmunofluorescencia.

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